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 CRISPRエピゲノムエディターは、RNA干渉やアンチセンスオリゴヌクレオチドの一過性の性質を克服しながら、CRISPRゲノムエディターとは対照的に永続的なDNA改変を回避しつつ、遺伝子発現の持続的かつ可逆的な制御を可能にする。触媒的に不活性化したCas9(dCas9)などのDNA結合モジュールに、DNAメチル基転移酵素DNMT3Aの触媒ドメインを融合した現在のエピゲノムエディターは、CpGメチル化を導入することで遺伝子転写のサイレンシングを可能にする。しかしこのエピゲノムエディターは、組み込まれたメチルトランスフェラーゼの活性が制限されないために、オフターゲット活性、細胞毒性、トランスクリプトーム全体の摂動を引き起こすリスクを抱えている。
 エピゲノムエディター内のDNMT3A触媒ドメインとは対照的に、生細胞内の本来のDNMT3Aは、ATRX-DNMT3A-DNMT3L(ADD)ドメインによる触媒活性の自己阻害を伴っており、この自己阻害は未修飾H3K4(H3K4me0)の認識をきっかけとするアロステリック作用によって解除されDNMT3Aが活性化されるいう制御下にある。スクライブ社(Scribe Therapeutics)の研究チームは今回、この内因性アロステリック制御を、CasXをベースとするCRISPRエピゲノムエディターに組み込むアプローチを実装した。すなわち、dCas9をベースとしたCRISPRoffに代えてdCasXをベースとしそれにADDドメインを付加することで、アロステリックに制御されたDNMT3Aを含むEpigenetic Long Term CasX-based Repressors (アロステリックELXRs) を設計した Engineered Allosteric Control Enhances[Fig. 1 一部引用右図 A 参照]。
 アロステリックELXRは、オフターゲット部位でのメチル化を大幅に減少させ [Fig. 1 一部引用右図 D 参照]、メチル化感受性システムにおける用量依存的な増殖障害を回復させ、複数の遺伝子座にわたるオンターゲット活性を維持または増強した(平均で4倍以上の活性増加)。
 また、このアプローチは、Cas9ベースのシステムよりもCasXベースのシステムでより効果的であることが判明した 。これは、オフターゲット効果を低減するためのアロステリックゲートには、CasXの精度の高いターゲティングが必要である可能性を示している。
 機構的には、改変されたアロステリック作用により、DNMT3Aの活性化とそれに続くCpGメチル化がH3K4me3からH3K4me0への変換後にのみ起こる多段階のゲーティングプロセスが確立され、これには転写抑制ドメインによる増強が必要であることがわかった。
 ADDの標的変異誘発により、ELXRにおけるこのアロステリック機構が内因性DNMT3A調節と一致することが確認された。トランスクリプトーム全体のプロファイリングにより、アロステリックELXRの特異性が大幅に改善され、非アロステリックELXRと比較して、差次的発現遺伝子の数を10~100倍削減することがわかった。
 生体内では、ELXRの脂質ナノ粒子送達により、正確でオンターゲットのプロモーターメチル化と最小限のオフターゲット転写効果を伴う、強力で持続的なPCSK9サイレンシングが達成された。
 現在まで、CRISPRの特異性は主にガイドRNとDNAの相互作用によって制御されている。 CRISPRエピゲノムエディターにおいて、DNMT3A の内因性アロステリック制御を合成的に再構築することで、CRISPRエピゲノムエディターの忠実度と特異性を高め、より正確な CRISPR ベースの治療薬を設計するための一般的なフレームワークを確立する新しい制御層が実現した。
[補足]
 プレスリリースによると、 米スクライブ社はPCDK9を標的とするCRISPRエピゲノムエディター治療薬候補STX-1150の臨床試験を2026年半ばに開始する予定である。STX-1150は、CRISPR-CasXをベースとして、PCSK9 mRNAを抑制する標的エピジェネティックサイレンシング療法であり、霊長類を対象とする前臨床試験の好成績が公表されていた [crisp_bio 2025-11-24]
[出典]
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